Проведение проб на скрытую кровь


Методы проведения проб на скрытую кровь Амидопириновая проба

• Приготовление раствора. Смешивают равные количества 5% спиртового раствора амидопирина, 30% уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода (по 2-3 мл).

• Техника проведения. На стерильную вату наносят полученную смесь и протирают поршень шприца, цилиндр с наружной стороны, иглы, канюлю внутри. Затем заливают реактивы в цилиндр шприца, пропускают их через шприц на вату, проверяя цилиндр. Надевают иглу и делают то же самое, проверяя иглу. При наличии крови на вате появляется сине-зеленое окрашивание. Оно может появиться и при реакции на тройной раствор, хлорамин, лекарственные вещества.

Азопирамовая проба

• Техника проведения. Готовят 1,0-1,5% раствор солянокислого анилина в 95% растворе спирта этилового. Его хранят в холодильнике до 2 месяцев, вне холодильника - не более месяца. Перед постановкой пробы смешивают равные объемы азопирама и 3% раствора перекиси водорода.

• Техника проведения. Смесь использовать в течение 1-2 ч. Не проверять горячие инструменты, не держать раствор возле нагревательных приборов и на ярком свету. При попадании реактива на кровь в течение 1 мин появляется фиолетовое окрашивание.

Инструменты, после операции у больных с анаэробной инфекцией, дезинфицируют в 6% растворе перекиси водорода в течение 60 мин, а затем они проходят стандартную предстерилизационную подготовку, как и другие инструменты.

Укладка и подготовка к стерилизации

Инструменты стерилизуют воздушным (в сухожаровых шкафах), паровым (автоклавирование) и химическим методами. Для стерилизации в сухожаровых стерилизаторах инструменты помещают в металлические коробки (при снятых крышках, крышки стерилизуют рядом) или в упаковку из бумаги мешочной непропитанной (закладывают уже высушенные инструменты), или выкладывают их на специальные решетки стерилизатора и производят просушку инструментов при температуре - 80-85 °С, при открытой дверце стерилизатора, до полного испарения влаги с инструментов (рис. 4-2, рис. 4-3). Для стерилизации паром под давлением инструменты кладут в металлические биксы (выстланные двухслойной хлопчатобумажной простынкой (рис. 4-4, рис. 4-5) или двойные полотняные мешки (изготовленные из бязи).

Рис. 4-2. Общий вид сухожарового стерилизатора

Рис. 4-3. Общий вид сухожарового стерилизатора с хирургическими инструментами на решетках стерилизатора (с целью просушки)

Рис. 4-4. Общий вид загруженного металлического бикса

Рис. 4-5. Общий вид загруженного биксами парового стерилизатора

Перед химическим методом стерилизации хирургические инструменты, после предстерилизационной обработки, выкладывают на чистые простыни и производят просушку при комнатной температуре до полного испарения влаги с поверхностей инструментов.

Стерилизация хирургических инструментов

Инструментарии для медицинских манипуляций по риску имеют следующие различия.

• Критические - проникают в стерильные ткани или сосуды: имплантаты, скальпели, иглы, другие хирургические инструменты и т.д. Стерилизация - спороцидные химические вещества, длительный контакт.

• Полукритические - соприкасаются со слизистыми оболочками (за исключением стоматологических инструментов): гибкие эндоскопы, ларингоскопы, эндотрахеальные трубки, а также другие аналогичные инструменты. Дезинфекция высокого уровня - спороцидные химические вещества, кратковременный контакт.

Термометры, ванны для гидротерапии. Дезинфекция среднего уровня - больничные дезинфицирующие средства с указанием в маркировке о наличии туберкулоцидной активности.

• Некритические - (соприкасаются с неповрежденной кожей): стетоскопы, настольные приборы, подкладные судна и др. Дезинфекция низкого уровня - больничные дезинфицирующие средства без указания в маркировке о наличии туберкулоцидной активности.

Стерилизация хирургических инструментов осуществляется несколькими методами: воздушным (сухожаровые шкафы), паровым (автоклавирование) и химическим.

Воздушный - производится в воздушных стерилизаторах, которые находятся в стерилизационной комнате операционного блока или перевязочных хирургических отделений (рис. 4-6, рис. 4-7), по двум режимам:

• при 180 °С (+2 °С или -10 °С) в течение 60 мин;

• при 160 °С (+2 °С или -10 °С) в течение 150 мин.

Рис. 4-6. Общий вид воздушного стерилизатора снаружи

Рис. 4-7. Общий вид воздушного стерилизатора внутри

Оба режима рекомендуются для изделий из металла, стекла и силиконовой резины.

Паровой - производится в паровых стерилизаторах (рис. 4-8, рис. 4-9), которые располагаются в специальном помещении - автоклавной, по «основному» режиму стерилизации:

• при 132 °С (±2 °С) под давлением 2 атм. (0,2 МПа) в течение 20 мин.

Данный режим стерилизации рекомендуется для изделий коррозийно-стойкого металла, стекла, изделий из текстильных материалов.

Химический - проводится при полном погружении в раствор в закрытых емкостях из пластмассы или покрытых эмалью на время стерилизационной выдержки, после чего изделие должно быть промыто стерильной водой.

Рис. 4-8. Общий вид парового стерилизатора снаружи

Рис. 4-9. Общий вид парового стерилизатора внутри

АЛГОРИТМ ПОСТАНОВКИ ПРОБ НА СКРЫТУЮ КРОВЬ

И МОЮЩЕЕ СРЕДСТВО.

I. Подготовка к манипуляции:

1. Приготовьте реактив:

Азопирам,

Фенолфталеин.

2. Приготовьте пипетку, салфетку, лоток.

3. Возьмите 1% инструментов от общего количества для проведения проб.

II. Выполнение манипуляции:

1. Наберите реактив в пипетку, капните на поршень, в иглу.

2. Налейте реактив в цилиндр, продвиньте поршень.

3. При наличии скрытой крови или моющего средства цвет реактива изменится.

4. Окрашивание, наступившее позже, чем через минуту, не учитывайте. При положительной пробе окраска будет следующей:

азопирамовая - фиолетовая, быстро переходящая в розово-сиреневую.

При положительной пробе на скрытую кровь изделия обрабатываются с первого этапа до получения отрицательного результата.

Проба на наличие моющего средства - фенолфталеиновая.

Готовят 1%-ый раствор фенолфталеина. Наносят на вымытое изделие одну-две капли раствора. При наличии остаточных количеств моющего средства появится розовое окрашивание. Обработку изделия повторяют со II этапа до получения отрицательного результата.

III. Окончание манипуляции:

1. Уберите оснащение для проведения проб.

2. Продолжайте предстерилизационную очистку проверенного инструментария и шприцев.

ВНИМАНИЕ!Все дезсредства готовятся с соблюдением правил техники безопасности, в индивидуальных средствах защиты.

При приготовлении дезрастворов обращайте внимание на форму выпуска и единицу измерения дезсредства (порошкообразные – в граммах, твердые - в таблетках, жидкие (концентраты, растворы) – в миллилитрах).

ü Для приготовления растворов хлорамина возьмёте порошка: 1% р-р – 10 граммов, 3% р-р – 30 граммов, 5% р-р – 50 граммов и до литра дольёте необходимое количество воды.

ü При приготовлении дезрастворов из хлорсодержащих таблеток (Жавель, Нью-жавель, Жавелион, Пюржавель и т.д) 0,1% р-р -7 таблеток на 10 литров воды, 0,015% р-р – 1 таблетка на 10 литров воды.

ü Для приготовления растворов из концентрата ( Ника –экстра М, Бриллиант, Экобриз, Амексан, Аламинол. и т.д.) возьмёте: 1% р-р -100 мл. на10 литров воды.

В ЛПУ дезсредства меняются каждые 2 – 3 месяца. При приготовлении дезрастворов из не известных Вам средств, внимательно изучите инструкцию и воспользуйтесь таблицами приготовления растворов различной концентрации.

Режим дезинфекции различных объектов

Растворами средства «Ника - экстра М».

Дезинфицирующее средство с моющим эффектом.

Режим обеззараживания Концентрация р-ра (%) К-во мл Ника-экстра на 10 л воды Время обеззараживания (мин) Способ обеззараживания
Поверхности в помещениях, поверхности приборов, аппаратов, жесткая мебель Протирание, Орошение
Посуда без остатков пищи Погружение
Белье, не загрязненное выделениями Замачивание
Белье, загрязненное выделениями Замачивание
Предметы ухода за больными Протирание двукратное или погружение
Уборочный инвентарь Протирание двукратное или погружение
Санитарно-техническое оборудование Протирание 2х кратное через 15 мин

Режим дезинфекции различных объектов

Растворами средства «Бриллиант»

(применяется и для предстерилизационной очистки инструментария)

Объекты обеззараживания Концентрация р-ра (%) Кол-во мл «Бриллианта» на 10 л воды Время обеззараживания (мин) Способ обеззараживания
Изделия медназначения из металлов, стекла, пластмасс, резин Погружение
Предметы ухода за больными из стекла, пластмасс, резин Погружение или двукратное протирание с интервалом 15 мин
Поверхности в помещениях, жесткая мебель, поверхности приборов, аппаратов Протирание
Санитарно-техническое оборудование Двукратное протирание или орошение с интервалом 15 мин
Уборочный инвентарь Протирание, замачивание
Эндоскопы Погружение

Режим дезинфекции различных объектов

Растворами средств Нью-жавель, Жавелион, Пюр-жавель,

И подобными хлорсодержащими

Объекты обеззараживания Концентрация рабочего раствора (%) Колич-во таблеток на 10 л воды Время обеззараживания (мин). Способ обеззараживания
Соматические, хирургические, процедурные кабинеты, лаборатория 0,015 Протирание и орошение
Поверхности в помещениях, жесткая мебель 0,015 Протирание
Санитарно-техническое оборудование 0,06 Протирание
Посуда без остатков пищи 0,015 Погружение
Посуда с остатками пищи 0,1 Погружение
Белье не загрязненное 0,015 Замачивание
Белье, загрязненное 0,1
Предметы ухода за больным (из стекла, пластмасс, резины) 0,06 Погружение
Изделия мед. назначения из коррозийных металлов пластмасс, резины, стекла 0,06 Погружение
Уборочный инвентарь (ветошь) 0,1 Замачивание
Резиновые коврики 0,1 Погружение
Генеральная уборка 0,1  

Срок годности рабочих растворов 3 суток

Дезинфекция может производиться с добавлением моющего средства - 0,5%

Режим дезинфекции различных объектов

Растворами средства «Жавель-Клейд»

Объекты обеззараживания Концентрация р-ра (%) Кол-во таблеток на 10 л воды Время обеззараживания (мин). Способ обеззараживания
Изделия медназначения из коррозионно-стойких металлов, стекла, пластмасс, резин 0,1 Погружение
Предметы ухода за больными из стекла, пластмасс, резин 0,1 Погружение или протирание
Посуда без остатков пищи 0,015 Погружение
Белье, загрязненное выделениями 0,2 Замачивание
Белье, загрязненное кровью 0,2 Замачивание
Белье, не загрязненное выделениями 0,015 Замачивание
Поверхности в помещениях, жесткая мебель поверхности приборов, аппаратов 0,015 Протирание или орошение
Санитарно-техни-ческое оборудование 0,06 Двухкратное протирание через 15 мин
Уборочный инвентарь 0,3 Протирание двухкратное, замачивание

ОБРАБОТКА РУК

Впервые обработка рук для профилактики раневой инфекции была применена английским хирургом Джозефом Листером (J. Lister) в 1867 году. Обработка рук хирурга осуществлялась путём дезинфекции их раствором карболовой кислоты (фенола). Помимо этого, Листер использовал раствор карболовой кислоты для орошения инструментария, перевязочного материала и для распыления в воздухе над операционным полем.

Метод сэра Джозефа Листера (1827-1912) стал триумфом медицины 19-го века. В 21-м столетии обработка рук — этот простой метод профилактики инфекций (в первую очередь кишечных) — к сожалению, зачастую игнорируется как населением, так и некоторыми медицинскими работниками.

Между тем, правильная и своевременная обработка рук является залогом безопасности медицинского персонала и пациентов.

Обработка рук делится на три уровня:

  1. Бытовой уровень (механическая обработка рук)
  2. Гигиенический уровень (обработка рук с применением кожных антисептиков)
  3. Хирургический уровень (особая последовательность манипуляций при обработке рук с последующим одеванием стерильных перчаток)

Механическая обработка рук

Цель бытового уровня обработки рук — механическое удаление с кожи большей части транзиторной микрофлоры (антисептики не применяются).

Подобная обработка рук проводится:

  • после посещения туалета;
  • перед едой или перед работой с продуктами питания;
  • перед и после физического контакта с пациентом;
  • при любом загрязнении рук.

Необходимое оснащение:

  1. Жидкое дозированное нейтральное мыло или индивидуальное одноразовое мыло в кусочках. Желательно, чтобы мыло не имело резкого запаха. Открытое жидкое или брусковое многоразовое неиндивидуальное мыло быстро инфицируется микробами.
  2. Салфетки размером 15х15 см одноразовые, чистые для промокания рук. Использование полотенца (даже индивидуального) не желательно, т. к. оно не успевает просохнуть и, кроме того, легко обсеменяется микробами.

Правила обработки рук:

Снимаются с рук все украшения, часы, поскольку они затрудняют удаление микроорганизмов. Руки намыливаются, затем ополаскиваются тёплой проточной водой и всё повторяется сначала. Считается, что при первом намыливании и ополаскивании тёплой водой микробы смываются с кожи рук. Под воздействием тёплой воды и самомассажа поры кожи открываются, поэтому при повторном намыливании и ополаскивании смываются микробы из раскрывшихся пор.

Тёплая вода способствует более эффективному воздействию антисептика или мыла, в то время как горячая вода удаляет с поверхности рук защитный жировой слой. В связи с этим следует избегать употребления слишком горячей воды для мытья рук.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском гугл на сайте:

Пробы на скрытую кровь

14 .2

Для ее проведения используют три реактива: 5 % спиртовой раствор амидопирина, 3 % раствор перекиси водорода и 3 % раствор уксусной кислоты. 

Тремя разными пипетками (промаркированными для каждого реактива) берут 2—3 мл каждого реактива и смешивают в небольшой емкости. Затем чистой пипеткой 1—2 капли смеси реактивов наносятся на исследуемый инструмент, иглу, шприц и т. д. 

При наличии кровяных загрязнений появляется сине-зеленое окрашивание, в связи с чем необходима повторная обработка инструментов. 

Бензидиновую пробу ставят в двух модификациях:

1) с гидрохлоридом бензидина: 0,5—1 % раствор гидрохлорида бензидина, приготовленного на дистиллированной воде, смешивают с равным количеством 3 % раствора перекиси водорода; 

2) с сульфатом бензидина. В раствор, состоящий из 5 мл 50 % уксусной кислоты и растворенного в ней сульфата бензидина (0,025 г) , добавляют 5 мл 3 % раствора перекиси водорода. 

Техника постановки пробы та же, что и амидопириновой, т. е. пипеткой наносят раствор на рабочие части инструментов. Окрашивание раствора в зеленый или желтый цвет является признаком наличия на инструментах скрытой крови. 

Амидопириновая проба: правила проведения и оценки результата :

Амидопириновая проба – один из методов контроля предстерилизационной очистки медицинских инструментов. После применения моющих растворов на медицинских инструментах не должно оставаться следов белка, жира, крови и других загрязнений. Определить это невооруженным глазом невозможно: на помощь приходят химические реакции. Амидопириновая проба позволяет с точностью определить наличие скрытой крови. В статье рассмотрим правила и порядок ее проведения.

Реагенты

Раствор для амидопириновой пробы может изготавливаться непосредственно перед применением или же заранее. Поместив смесь во флакон с притертой пробкой в холодильник, ее можно хранить на протяжение одного месяца. Это достаточно удобно: не нужно каждый раз тратить время на приготовление раствора.

Для проведения амидопириновой пробы необходимы следующие вещества:

  • раствор перекиси водорода 3%;
  • раствор уксусной кислоты 30%;
  • спиртовой раствор амидопирина 5%.

Перед использованием следует проверить срок годности каждого из реагентов. Дополнительно для проведения реакции понадобятся: мензурка, лоток с сухими инструментами, приготовленными для пробы, лоток с ватными тампонами и пипетки. Все используемые емкости должны быть стерильны.

Метод приготовления и использования

Амидопириновая проба довольно легко проводится: не требуется никаких особых навыков, только четкое следование инструкции. Приготовив все реактивы, емкости и приспособления, следует приступить к процедуре. Для этого используется следующий алгоритм:

  1. В равных количествах смешать реагенты: уксусную кислоту (р-р 30%), перекись водорода (р-р 3%), амидопирин (спиртовой р-р 5%). При этом каждое из веществ набирать отдельной промаркированной для этих целей пипеткой. Например, пипетка для раствора перекиси водорода должна быть отмечена как «Для Н2О2».
  2. Раствор перемешать. Получается бесцветная жидкость. Взяв отдельную пипетку («Для реактива»), набрать смесь и нанести на сухие предметы, которые прошли предстерилизационную очистку. Раствор капать равномерно по всей площади исследуемого инструмента, в том числе на корпус, во внутреннюю полость, в просвет иглы и т. д.
  3. Держать предмет над стерильной салфеткой или ватой, внимательно наблюдать за тем, какого цвета раствор стекает с инструмента.
  4. Для проверки очистки многоразовых шприцев раствор набирают в него и медленно по капле выдавливают на чистую салфетку, наблюдая за изменением оттенка.

На данном этапе важно соблюсти правила стерильности всех используемых для приготовления и нанесения раствора инструментов. Результаты пробы не должны быть искажены, потому как для соблюдения правил асептики необходима, в частности, амидопириновая проба. Инфекции, которые могут содержаться в остатках крови, нередко становятся серьезной угрозой для жизни и здоровья населения.

Завершение пробы

После нанесения реагента на инструменты в течение минуты необходимо оценить результат. Если за 60 секунд произошло окрашивание, проба считается положительной. Изменение цвета в промежуток времени после 1 минуты не засчитывается. Положительная амидопириновая проба определяется в том случае, если раствор окрасился в фиолетовый (сине-зеленый) цвет. Отрицательная – если оттенок раствора не изменился после нанесения его на инструментарий.

После получения результатов в случае обнаружения остатков крови (положительная проба) всю партию инструментов снова подвергают предстерилизационной очистке. Если цвет жидкости не изменился, то проверяемый инструмент опускают в мыльный раствор. Затем всю партию направляют на стерилизацию установленным методом.

Амидопириновая проба действие оказывает подобно индикатору, она чувствительна к компонентам крови. К проведению предстерилизационной очистки выдвигается ряд требований. На инструментах не должно оставаться следов жира, крови, мыльного раствора и других посторонних веществ. Проверить качество очистки помогают различные пробы. Амидопириновая - одна из них.


Смотрите также